专利摘要

本发明公开了一种催化效率提高的ω‑转氨酶突变体I215F，属于基因工程和酶工程技术领域。本发明通过对ω‑转氨酶晶体结构中B因子较高的氨基酸进行定点突变，即将ω‑转氨酶215位置处的I突变成F，得到了一种催化效率得到提高的ω‑转氨酶突变体。本发明突变体I215F催化效率Kcat/Km提高了1.92倍，催化(R)‑phenethylamine生成acetophenone时，突变体的acetophenone最大转化率比天然酶提高了3.79倍。本发明得到的突变体比天然ω‑转氨酶更适用于在工业上的应用。

权利要求

1.一种催化效率提高的ω-转氨酶突变体，其特征在于，所述ω-转氨酶突变体的氨基酸序列为SEQ ID NO:5所示的序列。

2.一种含有编码权利要求1所述突变体的核苷酸序列的重组质粒载体。

3.根据权利要求2所述的重组质粒载体，其特征在于，所述重组质粒载体是在pET系列、pGEX系列、pCold系列或pUB中的任意一种质粒载体的基础上构建得到的。

4.编码权利要求1所述突变体的基因。

5.表达权利要求1所述突变体的基因工程菌。

6.权利要求1所述突变体、权利要求4所述的基因、权利要求5所述的基因工程菌在制备手性胺或非天然氨基酸中的应用，所述应用是催化(R)-phenethylamine生成acetophenone。

7.根据权利要求6所述的应用，其特征在于，所述应用是用于食品、化工或者制备药物。

说明书

技术领域

本发明涉及一种催化效率提高的ω-转氨酶突变体I215F，属于基因工程和酶工程技术领域。

背景技术

转氨酶(aminotransferase，transaminase)属于转移酶类，通常用于催化氨基由氨基供体化合物转移至氨基受体化合物。根据不同可变区的差异，将文献报道的不同来源的转氨酶的蛋白质序列进行比较和聚类分析，再根据亲水位点的叠加和迭代对比，我们可以将转氨酶分为4类。其中ω-转氨酶属于第二亚族，常用于制备手性胺及非天然氨基酸，如β-氨基酸。因为ω-转氨酶的大口袋结合区域比天冬氨酸转氨酶(AspATs)和芳香族转氨酶(AroATs)稍大，所以它可能能够结合比天然氨基酸体积较大的底物。转氨酶催化的反应主要有不对称合成和动力学拆分，利用酶催化合成手性胺类化合物，不仅可以大大的提高产率，还可以避免原料的浪费，以制得大量的光学纯度较高的手性胺类化合物。ω-转氨酶不仅可以应用于对外消旋体的拆分，还可以催化前体酮底物不对称合成手性胺类化合物。ω-转氨酶在制备手性胺类化合物范围较广，因此更具有应用价值。

在蛋白质分子改造中，目前常用的方法有理性设计、非理性设计和半理性设计。三种方法的主要区别在于是否充分了解酶蛋白分子结构以及是否需要使用生物信息学软件进行计算和预测。其中理性设计具有实验成本低、简单方便和时间短等优点。

虽然ω-转氨酶有着巨大的应用和研究价值，但是从野生菌中筛选出的ω-转氨酶催化效率低，大大降低了ω-转氨酶的开发和运用。

发明内容

为了解决上述问题，本发明将来自Bacillus pumilus W3的ω-转氨酶(一种来自短小芽孢杆菌的ω-转氨酶及在生物胺化中的应用.201811219769.7)进行异源表达和定点突变改造，提高ω-转氨酶对特异底物催化速率，对ω-转氨酶的规模化生产及推广具有深远的技术指导意义。

本发明的ω-转氨酶突变体，与亲本ω-转氨酶相比有更好的催化效率。所述亲本基因与短小芽孢杆菌(Bacillus pumilus W3)ω-转氨酶基因(Sequence ID：MH196528)一致，所述作为突变用的质粒模板为携带天然ω-转氨酶编码基因的载体ota3/pColdⅡ(申请号：CN201811219769.7)。

本发明的第一个目的是提供一种催化效率提高的ω-转氨酶突变体，所述突变体的氨基酸序列包括：在SEQ ID NO:1的氨基酸序列的基础上将第215位置的异亮氨酸突变成苯丙氨酸而得到的氨基酸序列，命名为I215F。

在一种实施方式中，所述ω-转氨酶突变体的氨基酸序列，如SEQ ID NO:5所示的序列。

在一种实施方式中，所述ω-转氨酶突变体的核苷酸序列，包括SEQ ID NO:2所示的序列。

本发明的第二个目的是一种制备所述突变体的方法，包括如下步骤：

(1)设计定点突变所用引物，以携带ω-转氨酶编码基因的载体为模板进行突变并构建I215F突变体的质粒载体；

(2)将序列正确的重组质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)得到重组菌，将重组菌发酵培养，得到的发酵上清液即含有ω-转氨酶突变体。

在一种实施方式中，所述发酵是将重组菌于37℃培养至OD600＝0.6，然后降温至15℃并加入终浓度0.4mM的IPTG进行诱导，培养24h时离心获得上清酶液。

在一种实施方式中，所述制备方法还进一步包括使用AKTA蛋白纯化仪和HisTrapFF crude 1ml的镍柱对发酵上清液中的ω-转氨酶进行纯化。

本发明的第三个目的是提供一种含有所述突变体的氨基酸序列的重组质粒载体。

在一种实施方式中，所述质粒载体，是pET系列、pGEX系列、pCold系列或pUB中的任意一种。

本发明还要求保护编码所述突变体的基因以及表达所述突变体的基因工程菌。

本发明也要求保护所述突变体、编码述突变体的基因、表达所述突变体的基因工程菌在食品、化工或者制备药物方面的催化合成相关手性胺的应用，尤其是在制备药物中的应用。

在一种实施方式中，所述应用，包括催化氨基由氨基供体化合物转移至氨基受体化合物。

所述应用，包括可以选择性催化并可以手性合成手性胺，比如R-苯乙胺以及各种各样的非天然氨基酸。

本发明的有益效果：

本发明的ω-转氨酶突变体是以来源于Bacillus pumilus的R型ω-转氨酶为基础进行突变的，构建的ω-转氨酶突变体I215F具有催化效率提高的性能。酶动力学分析显示，本发明的突变体I215F的Km值比亲本天然酶下降了43.4％；催化效率Kcat/Km提高了1.92倍。催化(R)-phenethylamine生成acetophenone时，本发明突变体的acetophenone最大转化率比亲本天然酶提高了3.79倍。因此，本发明的ω-转氨酶突变体比亲本更适合ω-转氨酶在催化(R)-phenethylamine等手性胺过程中的应用。

附图说明

图1：天然ω-转氨酶三维模拟结构；

图2：天然ω-转氨酶及突变体纯酶SDS-PAGE凝胶电泳；其中，泳道1代表蛋白分子量标准，泳道2为突变体I215F，泳道3为天然ω-转氨酶。

具体实施方式

实施例1：ω-转氨酶定点突变体的制备及构建

来源于Bacillus pumilus W3的ω-转氨酶1种定点突变体I215F：

本发明中，以相似度最高的thermophilic archaea转氨酶晶体结构(PDB ID:5E25)为模板，通过Swiss-Model在线服务器构建了Bacillus pumilus W3ω-转氨酶(ω-BPAT)的三维模拟结构(图1)。通过氨基酸一级序列比对发现，thermophilic archaea转氨酶和ω-BPAT两者之间相似度达到51.21％，符合同源建模的参数，因此可以认为ω-BPAT有着thermophilic archaea转氨酶相似的三维结构。根据软件分析预测的结果，利用PCR介导的定点突变方法构建突变体I215F。

定点突变体的制备方法，根据Bacillus pumilus W3ω-转氨酶的序列(氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示)，分别设计并合成引入定点突变的引物，对ω-转氨酶I215位置进行定点突变，测定DNA编码序列，分别测序确认ω-转氨酶突变体的编码基因是否正确；将突变体基因连接到适当的表达载体(pET系列、pGEX系列、pCold系列或pUB中任意一种)中并导入大肠杆菌中进行表达，得到相应的ω-转氨酶定点突变体。

定点突变体编码基因的PCR扩增：利用PCR技术，以表达载体ota3/pColdⅡ为模板。

引入I215F定点突变的突变引物为(分别为SEQ ID NO:3、SEQ ID NO:4)：

I215F-F：5’-GGCGCATTAGAGGGTTTTACCCGCAACGCAA-3’

I215F-R：5’-AATATAACCTGGCGGAGTGTACAGTTTACC-3’

PCR扩增程序设定为：首先，94℃预变性5min；然后进入30个循环：94℃变性30s，55℃退火30s，72℃延伸5min；最后72℃延伸10min，4℃保温。PCR产物用1％琼脂糖凝胶电泳进行检测。

PCR产物纯化后，加入DPn I，37℃，水浴1h，降解模板，之后转化E.coli JM109，挑取阳性克隆，LB液体培养基培养8-10h，保甘油管，送去测序。测序正确的突变体(氨基酸序列如SEQ ID NO:5所示、核苷酸序列如SEQ ID NO:2所示)，从甘油管接种至LB培养基，过夜培养，提取质粒，将质粒转化表达宿主大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞，得到能够表达突变体I215F重组菌株。

实施例2：天然ω-转氨酶和其定点突变体的表达与纯化

挑取转入表达宿主大肠杆菌BL21(DE3)的阳性单克隆于LB液体培养基(含30μg/mL氨苄青霉素)生长8～10h，按5％接种量将种子发酵液接到LB液体培养基(含30μg/mL氨苄青霉素)；大肠杆菌在37℃摇床培养2h，至OD600＝0.6左右，突变体I215F重组菌株加入0.05mM终浓度的IPTG诱导胞外表达，并在15℃摇床继续培养发酵24h后，将发酵液于4℃、8000g离心10min除菌体，收集离心发酵上清液。在磁力搅拌子低速搅拌下，向突变体发酵上清液中缓慢加入60％(NH4)2SO4，4℃放置盐析过夜。4℃、10000g离心20min，收集沉淀。用50mmol/LpH 5.3柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液复溶沉淀后，在50mmol/L pH 5.3柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液中透析过夜，期间更换2-3次透析缓冲液，通过0.22μm膜过滤后制成上样样品。采用AKTA avant蛋白纯化仪进行重组蛋白的纯化，整个纯化过程温度控制为4℃。阳离子交换色谱纯化步骤：(1)平衡：用5倍体积的50mmol/L pH 5.3柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液平衡强阳离子交换色谱柱；(2)上样：预先处理好的样品以1mL/min的流速上样；(3)洗脱：包括洗脱未吸附物质、杂蛋白和目的蛋白，流速1.0mL/min，洗脱液为含有1M NaCl的50mmol/L pH 5.3的柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液，进行线性洗脱，检测波长为280nm，分批收集含蔗糖异构酶酶活的洗脱液；洗脱过程只出现一个目的蛋白洗脱峰，后续测酶活及SDS-PAGE蛋白电泳发现，无论是野生型，还是突变体，峰顶收集的酶液为最纯的部分。如图2所示。

实施例3：酶活分析方法

ω-转氨酶酶活测定方法参照Gao,S.(Gao,S.,Su,Y.,Zhao,L.,Li,G.,Zheng,G.,2017.Characterization of a(R)-selective amine transaminase from Fusariumoxysporum.Process.Biochem.63,130-136.)。

取适量菌体上清液(或者纯化稀释酶液)，加入500μL磷酸二氢钠/磷酸氢二钠缓冲液(100mM，pH7.0)，该缓冲液中含有20mM(R)-α-phenethylamine(or(S)-α-phenethylamine)，20mM丙酮酸钠，0.1mM pyridoxal 5’-phosphate(PLP)，混匀，45℃分别反应15min，然后加入同等量的乙酸乙酯终止反应。测定反应前后溶液在254nm处的吸光度。

在上述条件下，1分钟内催化1μmol相关酮类所需要的酶量，定义为一个酶活单位(U/ml)。通过△A254计算ω-转氨酶酶活。U/ml＝(△A/min)*(V*/rvb)；△A/min-吸光度变化；V-反应体系体积(ml)；；r-摩尔消光系数(cm2/umol)；v-样品量(ml)；b-比色杯光程(cm)，上述用量可按比例增加或减少。

经测定，天然酶的粗酶活为1.1760U/mL，本发明的重组ω-转氨酶的酶活为3.2988U/mL。

实施例4：ω-转氨酶突变体的动力学参数测定

ω-转氨酶的动力学参数测定方法参照Gao,S.(Gao,S.,Su,Y.,Zhao,L.,Li,G.,Zheng,G.,2017.Characterization of a(R)-selective amine transaminase fromFusarium oxysporum.Process.Biochem.63,130-136.)。

本实施例测定了实施例2纯化得到的天然酶(氨基酸序列如SEQ ID NO:1所示)及突变体I215F(氨基酸序列如SEQ ID NO:5所示)在45℃下的动力学参数。具体实施方法为：取适量菌体上清液(或者纯化稀释酶液)，加入500μL磷酸二氢钠/磷酸氢二钠缓冲液(100mM，pH7.0)，该缓冲液中含有不同浓度的(R)-α-phenethylamine(具体浓度梯度参照上述文献)，20 mM丙酮酸钠，0.1 mM pyridoxal 5’-phosphate(PLP)，混匀，45℃分别反应15min，然后加入同等量的乙酸乙酯终止反应。动力学研究的结果如表1所示。

结果显示，与天然酶(WT)相比，突变体I215F的Km值下降了43.4％，Km值的降低表明了突变体对底物(R)-α-phenethylamine的亲合力得到了增强。此外，I215F的催化常数Kcat得到了提高，是天然酶的1.08倍。与天然酶相比，催化常数Kcat和底物亲合力的提高，直接导致了突变体I215F的催化效率Kcat/Km提高了1.92倍。

如图1所示，I215F远离ω-转氨酶的催化中心和异构区域，突变可能会导致除催化中心和异构区域的其他部分区域的结构变得紧凑，使得底物不容易从催化中心脱离，从而可能会对酶的动力学参数产生积极的影响。

表1ω-转氨酶突变体的动力学参数

转化率是指将(R)-α-phenethylamine变成苯乙酮的转化效率。

实施例5：突变体在(R)-α-phenethylamine生产中的应用

ω-转氨酶可以分为R-ω-转氨酶和S-ω-转氨酶，不同类型的ω-转氨酶可以催化的底物类型不同，因此可以产生具有不同光学特性的产物。本实施例以(R)-α-phenethylamine为氨基供体，丙酮酸钠为氨基受体，检测所获得的重组酶及突变重组酶对其的催化能力，从而判断该酶是否可以高效催化(R)-α-phenethylamine，以确定其在手性胺工业合成中的应用。

手性合成催化实验：取适量纯化稀释酶液，加入500μL磷酸二氢钠/磷酸氢二钠缓冲液(100mM，pH7.0)，该缓冲液中含有20 mM(R)-α-phenethylamine，20 mM丙酮酸钠，0.1mMpyridoxal 5’-phosphate(PLP)，混匀，45℃分别反应15min，然后加入同等量的乙酸乙酯终止反应。12,000×g离心1min，取上层有机相，0.22μm滤膜过滤，进行高效液相(HPLC)检测，检测产物为苯乙酮。

检测条件：

柱子：Agilent C18 column(250*4.6 mm,Agilent,USA)；流动相：乙腈/水(50/50,v/v)；流速：0.6mL/min；检测波长：254nm。

表2

对照样：以(R)-phenethylamine为底物，在上述反应条件下检测天然ω-转氨酶对其的催化能力。

试验样：以(R)-phenethylamine为底物，在上述反应条件下检测ω-转氨酶I215F突变体对其的催化能力。

数据表明该重组酶对实验组(以ω-转氨酶I215F突变体为催化剂)的催化活性优于对照组(以天然ω-转氨酶为催化剂)。上述数据表明该重组ω-转氨酶I215F突变体具有高效选择性合成R-手性胺的功能，有较大应用潜力(见表3)。

表3

酶活(U/mg)：1分钟内催化1μmol相关酮类所需要的酶量，定义为一个酶活单位(U/mg)。

虽然本发明已以较佳实施例公开如上，但其并非用以限定本发明，任何熟悉此技术的人，在不脱离本发明的精神和范围内，都可做各种的改动与修饰，因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。

SEQUENCE LISTING

<110> 江南大学

<120> 一种催化效率提高的ω-转氨酶突变体I215F

<160> 5

<170> PatentIn version 3.3

<210> 1

<211> 304

<212> PRT

<213> 人工序列

<400> 1

Met Glu Asp Gln Lys Glu Gln Trp Ile Phe Leu Asn Asp Glu Leu Val

1 5 1015

Lys Lys Glu Asp Ala Lys Ile Ser Val Tyr Asp His Gly Phe Leu Tyr

202530

Gly Asp Gly Val Phe Glu Gly Ile Arg Val Tyr Asn Gly Asn Ile Phe

354045

Arg Met Lys Glu His Leu Asp Arg Leu Tyr Asp Ser Ala Arg Ser Ile

505560

Met Leu Asn Ile Pro Tyr Ser Leu Glu Glu Leu Thr Glu Lys Met Ile

65707580

His Thr Val Glu Arg Asn Gly Leu Lys Asp Ala Tyr Ile Arg Leu Val

859095

Val Ser Arg Gly Ala Gly Asp Leu Gly Leu Asp Pro Asn Asn Cys Gly

100 105 110

Arg Ala Asn Thr Val Ile Ile Val Glu Pro Leu Ala Ile Phe Pro Lys

115 120 125

His Leu Tyr Glu Thr Gly Ile Asp Ile Val Thr Val Pro Thr Arg Arg

130 135 140

Asn Arg Pro Asp Val Leu Ser Pro Lys Val Lys Ser Leu Asn Tyr Leu

145 150 155 160

Asn Asn Ile Leu Val Arg Ile Glu Ala His Met Ala Gly Val Ser Glu

165 170 175

Ala Leu Met Leu Asn Asp Gln Gly Tyr Val Ala Glu Gly Ser Ala Asp

180 185 190

Asn Val Phe Ile Tyr Lys Lys Gly Lys Leu Tyr Thr Pro Pro Gly Tyr

195 200 205

Ile Gly Ala Leu Glu Gly Ile Thr Arg Asn Ala Ile Met Glu Ile Ala

210 215 220

Glu Asp Leu Gly Tyr Glu Val Lys Glu Glu Pro Phe Thr Arg His Asp

225 230 235 240

Val Tyr Thr Ala Glu Glu Val Phe Leu Thr Gly Thr Ala Ala Glu Val

245 250 255

Ile Ala Val Val Lys Val Asp Gly Arg Met Ile Gly Glu Gly Lys Pro

260 265 270

Gly Phe His Thr Asn Lys Leu Leu Glu Gln Phe Arg Lys Arg Val Val

275 280 285

Glu Glu Gly Glu Lys Val Val Phe Thr Asp Glu Asn Ile His Ala Ser

290 295 300

<210> 2

<211> 915

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 2

atggaggatc agaaggaaca gtggatcttt ctgaacgatg agctggtgaa gaaggaagac 60

gcaaaaatct ctgtatacga ccatgggttc ttatatggcg atggggtctt cgaaggcatt 120

cgtgtctaca acggcaatat cttccgtatg aaagaacatt tggaccgcct ttacgatagc 180

gcacgtagta ttatgttgaa tatcccgtat tcacttgaag agctgacaga aaagatgatt 240

cacacagttg agcgtaacgg tttgaaggat gcttacatcc gcttggtcgt gtctcgcgga 300

gcgggcgact tgggattaga cccgaacaat tgtggtcgcg ccaatactgt tatcattgtt 360

gaacctctgg caattttccc gaaacatttg tacgagaccg gcatcgacat tgtaacggtt 420

cccacccgcc gtaatcgtcc cgatgtcctt tcgccaaaag taaaatctct taattatctg 480

aacaacatcc ttgttcgcat tgaggcccac atggcaggtg taagtgaagc gttaatgctt 540

aatgatcaag gatatgtagc cgaagggtcg gctgataatg tttttatcta taaaaaaggt 600

aaactgtaca ctccgccagg ttatattggc gcattagagg gttttacccg caacgcaatt 660

atggagattg cggaagatct tgggtacgag gtcaaggaag agcctttcac gcgccatgac 720

gtctatacag cagaggaagt ttttcttacc ggtacggctg ctgaggtcat cgcagttgta 780

aaggttgacg gacgcatgat tggcgaagga aagccggggt tccacactaa caaattactt 840

gaacaattcc gcaaacgcgt agtggaggag ggagagaagg ttgtctttac ggatgaaaat 900

atccatgcgt cgtaa 915

<210> 3

<211> 31

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 3

ggcgcattag agggttttac ccgcaacgca a 31

<210> 4

<211> 30

<212> DNA

<213> 人工序列

<400> 4

aatataacct ggcggagtgt acagtttacc 30

<210> 5

<211> 304

<212> PRT

<213> 人工序列

<400> 5

Met Glu Asp Gln Lys Glu Gln Trp Ile Phe Leu Asn Asp Glu Leu Val

1 5 1015

Lys Lys Glu Asp Ala Lys Ile Ser Val Tyr Asp His Gly Phe Leu Tyr

202530

Gly Asp Gly Val Phe Glu Gly Ile Arg Val Tyr Asn Gly Asn Ile Phe

354045

Arg Met Lys Glu His Leu Asp Arg Leu Tyr Asp Ser Ala Arg Ser Ile

505560

Met Leu Asn Ile Pro Tyr Ser Leu Glu Glu Leu Thr Glu Lys Met Ile

65707580

His Thr Val Glu Arg Asn Gly Leu Lys Asp Ala Tyr Ile Arg Leu Val

859095

Val Ser Arg Gly Ala Gly Asp Leu Gly Leu Asp Pro Asn Asn Cys Gly

100 105 110

Arg Ala Asn Thr Val Ile Ile Val Glu Pro Leu Ala Ile Phe Pro Lys

115 120 125

His Leu Tyr Glu Thr Gly Ile Asp Ile Val Thr Val Pro Thr Arg Arg

130 135 140

Asn Arg Pro Asp Val Leu Ser Pro Lys Val Lys Ser Leu Asn Tyr Leu

145 150 155 160

Asn Asn Ile Leu Val Arg Ile Glu Ala His Met Ala Gly Val Ser Glu

165 170 175

Ala Leu Met Leu Asn Asp Gln Gly Tyr Val Ala Glu Gly Ser Ala Asp

180 185 190

Asn Val Phe Ile Tyr Lys Lys Gly Lys Leu Tyr Thr Pro Pro Gly Tyr

195 200 205

Ile Gly Ala Leu Glu Gly Phe Thr Arg Asn Ala Ile Met Glu Ile Ala

210 215 220

Glu Asp Leu Gly Tyr Glu Val Lys Glu Glu Pro Phe Thr Arg His Asp

225 230 235 240

Val Tyr Thr Ala Glu Glu Val Phe Leu Thr Gly Thr Ala Ala Glu Val

245 250 255

Ile Ala Val Val Lys Val Asp Gly Arg Met Ile Gly Glu Gly Lys Pro

260 265 270

Gly Phe His Thr Asn Lys Leu Leu Glu Gln Phe Arg Lys Arg Val Val

275 280 285

Glu Glu Gly Glu Lys Val Val Phe Thr Asp Glu Asn Ile His Ala Ser

290 295 300

一种催化效率提高的ω-转氨酶突变体I215F专利购买费用说明

Q：办理专利转让的流程及所需资料

A：专利权人变更需要办理著录项目变更手续，有代理机构的，变更手续应当由代理机构办理。

1：专利变更应当使用专利局统一制作的“著录项目变更申报书”提出。

2：按规定缴纳著录项目变更手续费。

3：同时提交相关证明文件原件。

4：专利权转移的，变更后的专利权人委托新专利代理机构的，应当提交变更后的全体专利申请人签字或者盖章的委托书。

Q:专利著录项目变更费用如何缴交

A：（1）直接到国家知识产权局受理大厅收费窗口缴纳,（2）通过代办处缴纳，（3）通过邮局或者银行汇款,更多缴纳方式

Q：专利转让变更，多久能出结果

A：著录项目变更请求书递交后，一般1-2个月左右就会收到通知，国家知识产权局会下达《转让手续合格通知书》。